# 假设最高浓度为1000 μg/mL,使用1:3.16稀释
concentrations <- c(1000, 316, 100, 31.6, 10, 3.16, 1, 0.316) # μg/mL体外3T3 NRU光毒性测试标准操作程序 (SOP)
OECD 测试指南 432
概述
1. 目的
本标准操作程序(SOP)描述了体外3T3中性红摄取(NRU)光毒性测试方法,用于:
- 识别经光激活的受试化学品的光毒性潜力
- 评估化学品在光照和非光照条件下的细胞毒性差异
- 预测化学品在体内的光毒性效应
2. 原理
体外3T3 NRU光毒性测试基于比较化学品在有光照和无光照条件下的细胞毒性:
- 细胞毒性通过中性红(NR)摄取量的浓度依赖性降低来评估
- 中性红(NR)是一种弱阳离子染料,可通过非离子扩散穿透细胞膜并积聚在溶酶体中
- 光毒性机制:光毒剂通过产生活性氧(ROS)等机制导致溶酶体膜通透性增加、pH梯度降低等不可逆变化
- 测试时间:在处理和照射后18-24小时测量NR摄取量
3. 适用范围
3.1 测试化学品类型
适用于可能诱导光毒性效应的化学品,包括:
- 局部给药的化妆品成分
- 系统给药后分布到皮肤/眼睛的药物
- 可能暴露于环境光的其他化学品
3.2 不适用情况
本测试不设计用于预测:
- 光基因毒性
- 光过敏
- 光致癌性
- 间接光毒性机制
- 代谢产物的效应
- 混合物的效应
4. 定义
| 术语 | 定义 |
|---|---|
| 光毒性 | 局部或系统给予光反应性化学品后,身体暴露于环境光所引发的毒性反应 |
| 辐照度 | 紫外线(UV)或可见光入射到表面的强度,单位:W/m²或mW/cm² |
| 光照剂量 | 入射到表面的紫外线(UV)或可见辐射的量(强度×时间),单位:J/cm² |
| UVA波段 | 315-400 nm |
| UVB波段 | 280-315 nm |
| IC₅₀ | 使细胞活力降低50%的化学品浓度 |
| PIF | 光刺激因子 = IC₅₀(-Irr) / IC₅₀(+Irr) |
| MPE | 平均光效应 |
材料与试剂
1. 细胞系
BALB/c 3T3细胞(克隆A31)
来源:
- ATCC(美国模式培养物保藏中心)
- ECACC(欧洲细胞培养物保藏中心)
质量控制:
- 支原体检测阴性
- 细胞代次 < 100代(优选)
- 定期检查UV敏感性
细胞库管理:
- 建立主细胞库(MCB)和工作细胞库(WCB)
- 使用液氮冷冻保存
- 记录传代历史
2. 培养基与试剂
2.1 完全培养基
| 组分 | 浓度 |
|---|---|
| DMEM(Dulbecco改良Eagle培养基) | 基础培养基 |
| 新生小牛血清 | 10% (v/v) |
| L-谷氨酰胺 | 4 mM |
| 青霉素 | 100 IU/mL |
| 链霉素 | 100 μg/mL |
培养条件:
- 温度:37°C
- CO₂:5-7.5%(根据缓冲系统调整)
- 湿度:≥95%
2.2 缓冲盐溶液
选择以下之一:
- EBSS(Earle平衡盐溶液)
- HBSS(Hanks平衡盐溶液)
要求:
- 不含蛋白成分
- 不含光吸收成分(如酚红、维生素)
- pH稳定(避免照射50分钟期间pH升高)
2.3 中性红溶液
配制(50 μg/mL):
- 中性红(3-氨基-7-二甲基氨基-2-甲基吩嗪盐酸盐)
- CAS号:553-24-2
- C.I. 50040
- 溶解于无血清培养基
注意事项:
- 使用前预质量控制
- 过滤或离心去除结晶
- 可添加HEPES防止结晶
2.4 NR提取液(现配)
- 49%去离子水
- 50%乙醇
- 1%冰醋酸
3. 受试化学品制备
3.1 溶剂选择
优先顺序:
- 缓冲盐溶液(EBSS/HBSS)
- DMSO(二甲亚砜)- 最高1% (v/v)
- 乙醇 - 最高1% (v/v)
溶剂评估要求:
- 与受试化学品无反应
- 不诱导光毒性
- 不淬灭光毒性效应
- 无自由基清除特性
- 化学稳定性
3.2 溶解度
- 涡旋混合
- 超声处理
- 适当温度加热(不影响稳定性)
3.3 储存
- 测试当天新鲜配制(除非稳定性数据支持)
- 避免预先光激活或降解
4. 阳性对照
推荐:氯丙嗪(Chlorpromazine, CPZ)
| 参数 | 可接受范围 |
|---|---|
| CPZ (+Irr) IC₅₀ | 0.1 - 2.0 μg/mL |
| CPZ (-Irr) IC₅₀ | 7.0 - 90.0 μg/mL |
| PIF | > 6 |
其他阳性对照(见表1):
- 胺碘酮(Amiodarone HCl)
- 诺氟沙星(Norfloxacin)
- 蒽(Anthracene)
- 原卟啉IX二钠(Protoporphyrin IX Disodium)
仪器设备
1. 细胞培养设备
| 设备 | 规格 |
|---|---|
| CO₂培养箱 | 37°C,5-7.5% CO₂,湿度≥95% |
| 生物安全柜 | II级A2型 |
| 倒置显微镜 | 相差功能 |
| 96孔板组织培养处理板 | 无菌、透明底 |
| 血球计数板 | 细胞计数 |
| 离心机 | 细胞沉淀用 |
2. 光照系统
2.1 光源(太阳模拟器)
推荐类型:
- 氙弧灯 - 与日光匹配最佳
- 掺杂金属卤化物弧灯 - 产热少、成本低
光谱要求:
- 发射完整太阳光谱:290-700 nm
- 经过滤后衰减UVB,允许UVA和可见光透过
- 符合ISO D65标准(国际室外日光标准)
2.2 滤光器
- 用于衰减高度细胞毒性的UVB波长
- 考虑96孔板盖的UV稳定剂过滤效应
- 测量透射光谱时应使用实际使用的板盖类型
2.3 剂量测定设备
UVA计:
- 宽带UVA计(定期校准)
- 通过实际使用的96孔板盖类型测量辐照度
光谱辐射计(外部校准):
- 定期测量光谱辐照度
- 调整UVA计校准
2.4 推荐照射参数
| 参数 | 值 |
|---|---|
| UVA剂量 | 5 J/cm² |
| UVA辐照度 | 1.7 mW/cm² |
| 照射时间 | 50分钟 |
| 温度 | 室温 |
剂量计算公式:
\[t (min) = \frac{照射剂量 (J/cm^2) \times 1000}{辐照度 (mW/cm^2) \times 60}\]
3. 分析设备
| 设备 | 规格 |
|---|---|
| 酶标仪/分光光度计 | 540±10 nm测量波长 |
| 微孔板振荡器 | 提取NR用 |
| 移液器 | 0.1-1000 μL范围 |
| 多通道移液器 | 96孔板操作 |
操作步骤
第1天:细胞铺板
步骤1:制备细胞悬液
- 从工作细胞库复苏细胞或从传代培养中获取细胞
- 用完全培养基调整细胞密度至 1 × 10⁵ cells/mL
- 确保细胞处于对数生长期,活力>90%
步骤2:铺板
| 板类型 | 孔内容 | 体积 |
|---|---|---|
| 测试化学品板(+Irr) | 100 μL细胞悬液 | 1×10⁴ cells/孔 |
| 测试化学品板(-Irr) | 100 μL细胞悬液 | 1×10⁴ cells/孔 |
| 阳性对照板(+Irr) | 100 μL细胞悬液 | 1×10⁴ cells/孔 |
| 阳性对照板(-Irr) | 100 μL细胞悬液 | 1×10⁴ cells/孔 |
| 周边孔(空白) | 100 μL完全培养基 | - |
要点:
- 每种受试化学品需要2块板(+Irr和-Irr)
- 阳性对照需要2块板
- 周边孔加培养基作为空白对照
步骤3:培养
- 将96孔板置于37°C,5-7.5% CO₂培养箱
- 培养18-24小时
- 直至形成约50%汇合单分子层
- 此期间细胞恢复、贴壁并指数生长
第2天:化学品处理与照射
步骤4:制备受试化学品稀释系列
几何稀释系列(8个浓度):
确定最高测试浓度:
- 最大浓度:≤ 1000 μg/mL
- 许多情况下可降至100 μg/mL
- 对于不溶性化学品:使用最高可达到浓度
使用恒定稀释因子(例如:√10或2)
配制示例:
- 在所选溶剂中制备8个储液
- 将储液转移至水性载体(EBSS/HBSS)用于加样
- 保持最终溶剂浓度恒定(通常1% v/v)
步骤5:处理细胞
- 吸去培养基
- 轻柔洗涤:每孔加入150 μL缓冲液,吸去
- 加入100 μL含相应浓度受试化学品的缓冲液
- 溶剂对照孔:加入含相同浓度溶剂的缓冲液
- 在暗处培养60分钟
步骤6:光照/避光处理
光照板(+Irr):
- 在室温下通过板盖照射细胞
- 使用5 J/cm² UVA剂量(约50分钟)
- 确保温度控制在室温范围
避光板(-Irr):
- 在室温下保持在暗处
- 时间与照射板相同(约50分钟)
- 可用铝箔包裹或放置暗盒中
步骤7:洗涤与恢复
- 吸去测试溶液
- 用缓冲液洗涤2次(每孔150 μL)
- 加入100 μL新鲜完全培养基
- 置于培养箱过夜培养(18-24小时)
第3天:中性红摄取测定
步骤8:显微镜检查
使用相差显微镜检查:
- 细胞形态:观察形态学变化
- 单分子层完整性:检查是否有脱落或空洞
- 细胞生长:评估生长密度
- 异常:记录任何异常现象
步骤9:中性红摄取
- 预温育缓冲液至37°C
- 吸去培养基,用150 μL温育缓冲液洗涤细胞
- 吸去缓冲液
- 加入100 μL中性红溶液(50 μg/mL,无血清培养基)
- 在37°C、5-7.5% CO₂条件下培养3小时
步骤10:洗涤与提取
- 吸去中性红培养基
- 用150 μL缓冲液洗涤细胞
- 吸去缓冲液,彻底去除残留液体(可倒扣在纸巾上或离心)
- 加入精确150 μL NR提取液
- 在微孔板振荡器上温和振荡至少10分钟
- 直至NR完全提取且溶液均匀
步骤11:吸光度测定
- 在540±10 nm波长下测量吸光度
- 使用空白孔(周边孔)作为参考
- 将数据保存为适当的电子文件格式以便后续分析
数据分析
1. 数据质量要求
1.1 接受标准
溶剂对照:
- 照射的溶剂对照活力应 > 非照射溶剂对照的80%
- 溶剂对照的平均OD₅₄₀ ≥ 0.4(约为背景溶剂吸光度的20倍)
阳性对照(氯丙嗪):
- CPZ (+Irr) IC₅₀:0.1 - 2.0 μg/mL
- CPZ (-Irr) IC₅₀:7.0 - 90.0 μg/mL
- PIF > 6
细胞生长:
- 1×10⁴ cells/孔应在48小时内正常倍增
1.2 数据点要求
- 捕获有光照和无光照条件下的浓度-响应关系
- 如可能,确定IC₅₀值
- 包括在50%活力上下的浓度点
2. 细胞活力计算
\[相对活力(\%) = \frac{OD_{测试} - OD_{空白}}{OD_{溶剂对照} - OD_{空白}} \times 100\]
3. 浓度-响应曲线拟合
- 使用适当的连续浓度-响应曲线(模型)近似离散数据
- 通过非线性回归方法进行拟合
- 推荐使用bootstrap程序评估数据变异性的影响
4. 光毒性指标计算
4.1 光刺激因子(PIF)
\[PIF = \frac{IC_{50}(-Irr)}{IC_{50}(+Irr)}\]
说明:
- IC₅₀(-Irr):无光照条件下使活力降低50%的浓度
- IC₅₀(+Irr):有光照条件下使活力降低50%的浓度
- 如无法计算任一IC₅₀,则无法确定PIF
4.2 平均光效应(MPE)
MPE基于完整浓度-响应曲线的比较:
\[MPE = \frac{\sum_{i=1}^{n} w_i \cdot PE_{c_i}}{\sum_{i=1}^{n} w_i}\]
其中: - \(PE_c\) = 光效应 = \(RE_c \times DE_c\) - \(RE_c\)(响应效应)= \(R_c(-Irr) - R_c(+Irr)\) - \(DE_c\)(剂量效应)= \(\frac{C/C^*-1}{C/C^*+1}\) - \(w_i\)(权重因子)= \(\max\{R_i(+Irr), R_i(-Irr)\}\)
4.3 软件工具
OECD秘书处提供PIF和MPE计算软件包:
- PhotoTox version 2.0
- 网址:http://www.oecd.org/env/ehs/testing/section4software.htm
5. 结果解释
5.1 判读标准(基于验证研究)
| PIF | MPE | 预测 |
|---|---|---|
| < 2 | < 0.1 | 无光毒性 |
| > 2 且 < 5 | > 0.1 且 < 0.15 | 可疑光毒性 |
| > 5 | > 0.15 | 光毒性 |
5.2 特殊考虑
仅在最高浓度观察到光毒性效应时:
- 评估皮肤吸收数据
- 评估化学品的皮肤蓄积
- 考虑其他测试(如ROS试验)
- 进行体外动物或人体皮肤试验或皮肤模型测试
可疑/边界/不清楚的结果:
- 通过进一步测试澄清
- 考虑修改实验条件:
- 浓度范围或间距
- 培养时间
- 照射时间(对于水不稳定性化学品可使用更短时间)
质量控制
1. 细胞质量控制
1.1 支原体检测
- 细胞到达实验室时检测
- 仅当阴性时使用
1.2 UV敏感性检查
- 对工作细胞库至少检查一次
- 在最高使用代次进行测试
- 使用递增剂量照射(包括高于测试使用的剂量)
- 证明最高非细胞毒性剂量(5 J/cm²)足以正确分类能力验证化学品
1.3 历史数据
- 建立阳性对照的MPE历史数据库
- 监测实验性能随时间的变化
2. 仪器质量控制
2.1 光源
- 每次测试前使用UVA计检查辐照强度
- 通过实际使用的板盖类型测量
- 定期使用外部校准的光谱辐射计
2.2 培养箱
- 每日记录温度和CO₂浓度
- 定期清洁和校准
2.3 酶标仪
- 定期校准波长和吸光度准确性
- 使用标准溶液验证
4. 能力验证
初次建立本实验的实验室应测试能力验证化学品(表1):
| 化学品 | CAS号 | 预期PIF | 预期MPE | 光毒性 |
|---|---|---|---|---|
| 胺碘酮HCl | 19774-82-4 | >3.25 | 0.27-0.54 | 是 |
| 氯丙嗪HCl | 69-09-0 | >14.4 | 0.33-0.63 | 是 |
| 诺氟沙星 | 70458-96-7 | >71.6 | 0.34-0.90 | 是 |
| 蒽 | 120-12-7 | >18.5 | 0.19-0.81 | 是 |
| 原卟啉IX二钠 | 50865-01-5 | >45.3 | 0.54-0.74 | 是 |
| L-组氨酸 | 70-00-4 | <1 | 0.05-0.10 | 否 |
| 六氯酚 | 70-30-4 | 1.0-1.7 | 0.00-0.05 | 否 |
| 十二烷基硫酸钠 | 151-21-3 | 1.0-1.9 | 0.00-0.05 | 否 |
测试报告
测试报告应包括以下信息:
1. 受试化学品
- 识别数据、通用名、IUPAC名和CAS号(如已知)
- 物理性质和纯度
- 与研究相关的物理化学性质
- UV/vis吸收光谱
- 稳定性和光稳定性(如已知)
2. 溶剂
- 选择溶剂的理由
- 受试化学品在溶剂中的溶解度
- 处理培养基中溶剂的百分比
3. 细胞
- 细胞类型和来源
- 无支原体和其他污染
- 细胞传代代次
- 使用照射设备测定的特定代次范围细胞的辐射敏感性
4. 测试条件(1):处理前和处理后培养
- 培养基类型和组成
- 培养条件(CO₂浓度、温度、湿度)
- 培养持续时间(处理前、处理后)
5. 测试条件(2):化学品处理
- 选择有光照和无光照条件下受试化学品浓度的理由
- 受试化学品溶解度有限且无细胞毒性时:选择最高测试浓度的理由
- 处理培养基类型和组成(缓冲盐溶液)
- 化学品处理持续时间
6. 测试条件(3):照射
- 选择所用光源的理由
- 光源制造商和类型、辐射计
- 光源光谱辐照度特性
- 所用滤光器的透射和吸收特性
- 辐射计特性及其校准详情
- 光源与测试系统的距离
- 该距离下的UVA辐照度(mW/cm²)
- UV/vis光暴露持续时间
- UVA剂量(辐照度×时间,J/cm²)
- 照射期间和同期暗处保存的细胞培养温度
7. 测试条件(4):中性红活力测试
- 中性红处理培养基组成
- 中性红培养持续时间
- 培养条件(CO₂浓度、温度、湿度)
- 中性红提取条件(提取剂、持续时间)
- 分光光度计读数波长
- 第二波长(参考)(如使用)
- 酶标仪空白内容(如使用)
8. 结果
- 受试化学品各浓度下的细胞活力,表示为平均同时溶剂对照活力的百分比
- 同时进行的+Irr和-Irr实验获得的浓度-响应曲线
- 浓度-响应曲线分析:如可能,计算IC₅₀(+Irr)和IC₅₀(-Irr)
- 比较有光照和无光照条件下获得的两条浓度-响应曲线:
- 通过计算光抑制因子(PIF)
- 和/或通过计算平均光效应(MPE)(取决于剂量-响应曲线)
- 测试接受标准;同时溶剂对照:
- 照射和非照射细胞的绝对活力(中性红提取物的光密度)
- 历史阴性和溶剂对照数据;均值和标准差
- 测试接受标准;同时阳性对照:
- 阳性对照化学品的IC₅₀(+Irr)和IC₅₀(-Irr)及PIF/MPE
- 历史阳性对照化学品数据:IC₅₀(+Irr)和IC₅₀(-Irr)及PIF/MPE;均值和标准差
附录
附录A:测试流程图
flowchart TD
A[第1天:细胞铺板] --> B[18-24 h培养<br/>形成50%汇合单层]
B --> C[第2天:化学品处理]
C --> D[60分钟暗培养]
D --> E{分板}
E --> F[+Irr板:<br/>5 J/cm² UVA照射50分钟]
E --> G[-Irr板:<br/>室温暗处50分钟]
F --> H[洗涤 + 新鲜培养基]
G --> H
H --> I[18-24 h恢复培养]
I --> J[第3天:中性红摄取测定]
J --> K[3小时NR培养]
K --> L[提取 + 测定OD540]
L --> M[数据分析:<br/>计算PIF/MPE]
M --> N[结果判读]
附录B:决策树 - 光毒性测试策略
flowchart TD
A[评估化学品<br/>物理化学性质] --> B{UV/vis吸收光谱}
B -->|MEC < 1000 L mol⁻¹ cm⁻¹| C[无需光毒性测试]
B -->|MEC > 1000 L mol⁻¹ cm⁻¹| D[体外3T3 NRU光毒性测试]
D --> E{PIF < 2 或 MPE < 0.1}
E -->|是| F[无光毒性]
E -->|否| G{PIF > 5 或 MPE > 0.15}
G -->|是| H[光毒性]
G -->|否| I[可疑光毒性<br/>需进一步评估]
附录C:阳性对照试剂准备
氯丙嗪(Chlorpromazine)储液制备
1 mg/mL储液(在DMSO中):
- 精确称取10 mg氯丙嗪
- 加入10 mL DMSO
- 涡旋混合直至完全溶解
- 分装至小体积,避光保存于-20°C
工作液制备:
- 在EBSS/HBSS中稀释至所需浓度范围
- 保持最终DMSO浓度恒定为1% (v/v)
附录D:记录表格模板
测试记录表
| 项目 | 记录 |
|---|---|
| 测试日期 | |
| 操作员 | |
| 受试化学品 | |
| 批号 | |
| 溶剂 | |
| 细胞系 | BALB/c 3T3 |
| 细胞代次 | |
| 铺板密度 | 1×10⁴ cells/孔 |
| 光源类型 | |
| UVA辐照度 | mW/cm² |
| 照射时间 | min |
| UVA剂量 | J/cm² |
版本历史
| 版本 | 日期 | 修订内容 | 修订人 |
|---|---|---|---|
| 1.0 | 2024-01-XX | 基于OECD TG 432 (2019)创建初版 | - |